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暨大刘明贤教授团队 Nano Today: 含有多酚@埃洛石的海藻酸盐微球用于益生菌递送和炎症性肠病治疗
2025-02-19  来源:高分子科技

  炎症性肠病(IBD)是一种慢性、复发性肠道炎症性疾病,常表现为腹痛、腹泻和便血全球超过700万人受困扰。临床治疗主要通过抑制肠道炎症来缓解疾病相关症状,然而传统药物常存在靶向不足、粘膜屏障渗透有限等缺点,长期使用具有严重的副作用。埃洛石纳米管(HNTs)是矿物药“赤石脂”的主要成分,可用于治疗腹泻、溃疡和便血。口服益生菌疗法通过调节微生物平衡和生物活性物质的产生而备受关注。然而,由于缺乏抗氧化剂,炎症性肠道微环境易对益生菌造成氧化损伤。因此,开发同时包覆益生菌和抗氧化剂的新策略具有重要意义。


  近日,暨南大学化学与材料学院刘明贤教授团队利用茶多酚 (EGCG) 良好的粘附性和金属配位能力对HNTs进行功能化(MPN@HNTs),将其与海藻酸钠溶液共混制备MHBSA水凝胶微球用于益生菌递送和炎症性肠病的靶向治疗。该研究成果以Orally administered hydrogel containing polyphenol@halloysite clay for probiotic delivery and treatment of inflammatory bowel disease为题发表在Nano Today期刊上。暨南大学化学与材料学院博士陈翔宇为该论文第一作者,刘明贤教授为唯一通讯作者。


  图1a 展示了MPN@HNTs的制备过程:在弱碱性条件下,将HNTs超声分散在溶液中,依次添加 Fe3+  EGCG溶液并剧烈搅拌,使金属多酚网络 (MPN) 修饰到HNTs表面,合成 MPN@HNTs。通过TEMSEM和元素能谱分析确定了MPN 成功负载在 HNTs 表面。HNTs表面涂覆 MPN 后,尺寸从388.9±4.5 nm 增加到 414.8±4.2 nmZeta电位从 -17.6±0.6 mV降为 -30±1.3 mV。红外光谱和紫外可见光光谱证明了多酚和金属离子之间的成功配位。


1. MPN@HNTs 的合成与表征。(a) 制备示意图。(b) TEM 照片。(c) SEM 照片。(d) 元素能谱分析。(e) 粒度。(f) Zeta 电位。(g) FTIR 光谱。(h) UV-vis 光谱。(i) XPS全谱图。(j) Fe 2pk) C 1s、和l) O 1s的 XPS 谱图。


  图2a 展示了MHBSA 水凝胶微球的制备过程:将MPN@HNTsBL在海藻酸钠溶液中混合,采用气动泵动态挤出技术构建海藻酸微球体系(MHBSA)。通过SEM观察和元素能谱分析发现,MPN@HNTs在微球中均匀分布。MHBSAIEC-6RAW 264.7细胞共培养,细胞增殖不受影响,表现出良好的细胞相容性。微球在模拟胃液中2h仍保持完整的球形结构,但在模拟肠液中迅速溶胀,这一结果说明MHBSA微球能够耐受酸性胃环境并能成功在肠道环境中释放内容物。与海藻酸盐微球相比,在微球中添加MPN@HNTs后可明显提高益生菌在模拟胃液中的存活率,在模拟胃液中孵育2h后存活率仍可达81.7%,这是由于MPN@HNTs填充在水凝胶孔隙中,有效阻止了有害物质的进入。


2. MHBSA微球的制备、表征及稳定性测试(a) 制备示意图。(b) SEM 照片。(c) SEM放大照片。(d) 粒度分布。(e) 元素能谱分析。(f) /死染色荧光显微镜照片。(g) 在 模拟胃液和肠液中SGF 中浸泡 小时然后转移到 SIF 的 MHBSA 微球的数字和荧光显微镜图像。(h) 在 SGF 中孵育不同时间段后,商业益生菌、嵌入 MHBSA 和 BSA 的 BL 的存活率。


  清除炎症部位过量的ROS和促炎细胞因子是IBD治疗的关键。3a显示细胞摄取MPN@HNTs具有时间依赖性,这是MPN@HNTs在细胞内发挥功效的先决条件。相关实验结果表明,MPN@HNTs可以有效清除LPS诱导下细胞产生的ROS并降低细胞中促炎细胞因子(IL-6IL-1βTNF-α)的表达。除LPS外,还采用H2O2处理细胞建立氧化应激模型,50 μg mL-1 MPN@HNTs预处理可以减轻H2O2造成的氧化损伤,细胞活/死染色显示PI阳性细胞数量明显减少,细胞活力得以提升。此外,不同条件下的益生菌在模拟炎性结肠液中培养2小时后,平板计数结果显示MPN@HNTs预处理可以提高益生菌的存活率。基于这些体外 ROS 清除、抗炎作用和生物相容性的结果,MPN@HNTs 被认为在 IBD 治疗中具有巨大的潜力。


3. 体外抗炎和抗氧化性能测试(a) RAW 264.7MPN@HNTs的摄取行为。(b) DCFH-DA染色的RAW 264.7的荧光照片。(c) 流式细胞技术分析。(d) /死染色照片。(e) 细胞活力检测。(f) 平均荧光强度。(g-i) IL-1β、TNF-α、IL-6 mRNA 的相对表达水平。(j) 不同处理后巨噬细胞的形态。 (k)菌落照片。(l)采用平板计数法计算细菌量。(m)不同处理条件下BL的存活率。


  IBD发病时,伴随着肠内容物浸润到炎症区域,大量阳离子蛋白(如转铁蛋白、抗菌肽等)在结肠黏膜表面聚集。MHBSA微球在肠道环境中释放MPN@HNTs和益生菌。MPN@HNTs的强负电荷和丰富的酚羟基驱使它们聚集在肠道炎症部位(图4)。体外模拟实验中,将健康和结肠炎小鼠的结肠段(1 cm)与MPN@HNTs37°C下孵育,荧光成像照片显示,炎症结肠中滞留材料的荧光强度明显高于健康结肠。体内实验给小鼠口服等量MHBSA24 h后全肠道荧光成像照片和定量分析显示,肠炎小鼠结肠组织中MPN@HNTs黏附和滞留较多。以上结果表明材料可通过延长胃肠道滞留时间,提高口服利用度,从而实现结肠炎靶向治疗。


4. 炎症肠道粘附测试(a) 结肠粘膜示意图。(b) 远端结肠与MPN@HNTs在体外孵育后的荧光照片。(c) 口服MHBSA 24小时后,胃肠组织的荧光照片。(d) 结肠与MPN@HNTs在体外孵育后的总辐射效率。(e) 口服MHBSA 24小时后,结肠中的总辐射效率。(f) 口服MHBSA后,不同时间点胃肠道的荧光照片。(g) 使用IVIS成像系统量化的总辐射效率。


  为了进一步证明该策略的可行性,验证了MHBSADSS诱发的结肠炎小鼠模型中的治疗效果(图5)。MHBSA可有效缓解结肠炎小鼠的一系列症状,包括体重降低、脾肿大、湿尾和便血现象。该材料的止血止泻作用归因于HNTs通过吸水浓缩血液、激活血小板和凝血途径来止血。治疗结束后收集各组小鼠的结肠组织进行组织学分析。苏木精和伊红染色结果显示,DSS组结肠绒毛和隐窝结构受损严重,伴有大面积溃疡和大量免疫细胞浸润。相比之下,MHBSA治疗组微绒毛完整,指状隐窝结构规则,炎症细胞所占百分比低,形态接近对照组。MPN@HNTs表现出一定的治疗效果,但效果未达到MHBSA的水平,该结果展示了MPN@HNTs在增强MHBSAIBD治疗效果方面的作用。


5. MHBSA微球对DSS诱发的结肠炎小鼠的治疗效果。(a) 动物实验设计示意图。(b) 小鼠体重每日变化。(c) DAI评分。(d) 湿尾和便血的代表性照片。(e) 治疗后各组小鼠脾脏照片。(f) 治疗后各组小鼠结肠照片。(g) 结肠组织H&E染色照片。(h) 便血指数。(i) 腹泻指数。(j) 结肠长度量化。(k) 脾脏重量量化。(l) 组织学评分。


  通过组织学分析,证明MHBSA可以有效修复肠道粘膜屏障(图6)。OccludinZO-1是肠道中两种主要的紧密连接蛋白,与肠道屏障的完整性直接相关。采用免疫荧光染色分析结肠组织中Occludin-1ZO-1紧密连接蛋白的表达。健康组和MPN@HNTsMHBSA治疗组均观察到明亮的红色和绿色荧光,这表明不同治疗均能不同程度地恢复紧密连接蛋白的表达。粘蛋白构成肠道粘液层,由杯状细胞产生,阻止有害物质和病原体的进入。阿利新蓝-过碘酸雪夫染色结果显示,对照组和 MHBSA 处理组均出现丰富的杯状细胞,且杯状细胞数量明显高于 DSS 处理组。


6. MHBSA促进组织修复。(aOccludin 免疫荧光照片。(bOccludin 的定量分析。(cZO-1 免疫荧光照片。(dZO-1 的定量分析。(eAB-PAS 染色。(f)杯状细胞所占面积分析。


  通过多种炎症指标对治疗效果进行综合评价,MHBSA可有效缓解DSS引起的结肠损伤和免疫反应(7)。与模型组相比,MHBSA处理后减轻了氧化应激引起的 DNA 损伤,表现为结肠炎症部位的4-HNE(脂质过氧化标志物)和 8-OHDGDNA 损伤标志物)的荧光强度减弱。进一步研究了 MHBSA 对结肠炎小鼠的抗炎作用。MPN@HNTsMHBSA治疗后显著抑制结肠组织中促炎因子IL-6IL-1βTNF-α的表达,促进抗炎因子IL-10的表达。蛋白质印迹法和免疫组织化学结果显示MHBSA抑制了DSS诱导的肠道组织中TLR4MyD88NF-κB蛋白表达的上调,说明抑制TLR4/MyD88/NF-κB信号通路的激活可能是MHBSA发挥抗炎作用的药理机制。


7. MHBSA 微球抑制肠道炎症。(a-c4-HNE 和 8-OHDG 的免疫荧光照片及定量分析。(d - g)炎症因子的mRNA表达水平。(h)通过免疫印迹检测TLR4MyD88 和 NF-κ的蛋白质表达水平。(i - k)蛋白质表达水平的定量分析。


  为了探讨MHBSA对小鼠肠道菌群的调控作用,利用16S rRNA测序技术分析结肠炎小鼠粪便微生物的组成和丰度 (8)。微生物产生的短链脂肪酸(SCFAs)具有优良的抗炎特性,在缓解免疫系统紊乱以及维持肠道稳态中发挥重要作用。MHBSA处理后可以增加产SCFAs有益菌(LachnospiraceaeFirmicutes)的丰度。综合分析不同生物水平上不同处理组的微生物组成,MHBSA治疗组小鼠的肠道菌群更接近健康小鼠综上所述,MHBSA 通过调节肠道微生物群的组成,在IBD的治疗中发挥了积极作用。


8. 肠道菌群 16S rRNA 测序分析。(a-cShannon 指数(a)、Simpon 指数(b)和 Chao1 指数(c)。(d)基于unweighted unifrac 距离矩阵热图的 ρ多样性指数分析。(e)门水平肠道微生物相对丰度直方图。(f)科水平不同物种相对丰度直方图。(g)基于 metagenomeSeq 结果的目水平物种和组间功能差异热图。(hKO 功能的相对丰度直方图。(i)基于unweighted unifrac 距离的肠道菌群的主坐标分析 (PCoA)。(j)基于 Bray-Curtis指标的肠道菌群的主坐标分析 (PCoA) 图。(k)功能丰度聚类图。


  缓解炎症、调节肠道菌群是治疗IBD的关键,但单一组分药物或益生菌的治疗效果有限。受Smecta®Hemospray等矿物药的启发,本研究成功构建了含多酚修饰纳米黏土埃洛石和益生菌的水凝胶微球体系,用于IBD的靶向治疗。HNTs的强负电荷驱使MPN@HNTs靶向递送到炎症微环境并增强其在炎症肠黏膜中的滞留时间,减少了脱靶引起的全身副作用。HNTs通过吸收出血部位的水分并和血液发挥作用,实现止泻止血。抗氧化防御系统与益生菌的结合增加了结肠炎小鼠中有益菌的丰度,协同发挥调节肠道菌群作用。因此,含有HNTs和益生菌的pH响应性载药系统为IBD的治疗提供了新的方案。
该论文得到了国家自然科学基金52073121)、佛山国家高新技术产业开发区产业化创业团队计划2220197000129项目和中央高校基础研究基金(21624115)的资助。


  论文链接: 

  https://authors.elsevier.com/c/1kdDa6DSyBLhtW

  https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1748013225000416

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(责任编辑:xu)
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